• Фејсбук
  • линкедин
  • ЈуТјуб

Преглед

Брза идентификација трансгених биљака

Текст/Тонг Иуцхенг

Експериментална операција/Хан Јинг

Уредник/Вен Иоујун

Вордс/1600+

Предложено време читања/8-10 минута

Брза идентификација трансгених биљака

Као новајлија у лабораторији, није добар посао издвојити позитивне биљке из гомиле биљака са ниском стопом конверзије.Прво, ДНК се мора издвојити из великог броја узорака један по један, а затим ће се страни гени открити ПЦР-ом.Међутим, резултати су често празнине и траке са неколико ставки повремено, али је немогуће утврдити да ли постоје пропуштене детекције или лажне детекције..Да ли је беспомоћно суочити се са таквим експерименталним процесом и резултатима?Не брини, брат те учи како да лако и прецизно одстрањујеш трансгене позитивне биљке.

Корак 1: Прајмери ​​за детекцију дизајна

6.9-1

Одредите ендогени ген и егзогени ген који ће се детектовати према узорку који се тестира и изаберите репрезентативну секвенцу од 100-500 бп у гену за дизајн прајмера.Добри прајмери ​​могу осигурати тачност резултата детекције и скратити време детекције (погледајте додатак за најчешће коришћене прајмере за детекцију).

Белешка:

Ново дизајнирани прајмери ​​треба да оптимизују реакционе услове и провере тачност, прецизност и границу детекције пре него што изврше детекцију великих размера.

Корак 2:Развити експериментални протокол

6.9-2

Позитивна контрола: Користите пречишћену ДНК која садржи циљни фрагмент као шаблон да бисте утврдили да ли су ПЦР реакциони систем и услови нормални.

Негативна/празна контрола: Користите ДНК шаблон или ддХ2О који не садржи циљни фрагмент као шаблон за откривање да ли постоји извор контаминације у ПЦР систему.

Интерна референтна контрола: користите комбинацију прајмера/сонде ендогеног гена узорка који се тестира да бисте проценили да ли се шаблон може детектовати ПЦР-ом.

Белешка:

Позитивне, негативне/празне контроле и интерне контроле треба да буду постављене за сваки тест да би се проценила валидност експерименталних резултата.

Корак 3: Припрема експеримента

6.9-3

Пре употребе, проверите да ли је раствор равномерно измешан.Уколико дође до падавина, пре употребе га је потребно растворити и промешати према упутству.2×ПЦР мешавину треба пипетирати и мешати више пута микропипетом пре употребе да би се избегла неравномерна дистрибуција јона.

Белешка:

Извадите упутства и пажљиво их прочитајте, а пре експеримента извршите припреме строго у складу са упутствима.

Корак 4: Припремите ПЦР реакциони систем

6.9-4

Према експерименталном протоколу, помешати прајмере, Х2О, 2×ПЦР мешати, центрифугирати и дистрибуирати у сваку реакциону епрувету.

Белешка:

За обимно или дуготрајно тестирање, препоручује се употреба ПЦР реакционог система који садржи УНГ ензим, који може ефикасно избећи контаминацију аеросола узроковану ПЦР производима.

Корак 5: Додајте шаблон за реакцију

6.9-5

Коришћењем Дирецт ПЦР технологије, нема потребе за заморним процесом пречишћавања нуклеинске киселине.Шаблон узорка се може припремити у року од 10 минута и додати у одговарајући ПЦР реакциони систем.

Белешка:

Метода лизе има бољи ефекат детекције, а добијени производ се може користити за вишеструке реакције детекције.

6.9-6

5.1: Директни ПЦР листова

Према величини слике у упутству, исећи ткиво листа пречника 2-3мм и ставити га у ПЦР реакцијски систем.

Напомена: Уверите се да су фрагменти листа потпуно уроњени у ПЦР реакциони раствор и немојте додавати превише ткива листа.

5.2: Метода лизе листова

Исеците ткиво листа пречника 5-7мм и ставите га у епрувету за центрифугу.Ако изаберете зрело лишће, избегавајте коришћење ткива главне вене листа.Одпипетирајте 50 ул пуфера П1 лизата у епрувету за центрифугирање да бисте осигурали да лизат може у потпуности да урони ткиво листа, ставите га у термални циклус или метално купатило и лизирајте на 95°Ц 5-10 минута.

6.9-7
6.9-8

Додати 50ул раствора за неутрализацију пуфера П2 и добро промешати.Добијени лизат се може користити као шаблон и додати у ПЦР реакциони систем.

Напомена: Количина шаблона треба да буде између 5-10% ПЦР система и не би требало да прелази 20% (на пример, у ПЦР систему од 20 μл, додајте 1-2 μл пуфера за лизу, не више од 4 μл).

Корак 6: ПЦР реакција

6.9-9

Након центрифугирања ПЦР реакционе епрувете, ставите их у ПЦР инструмент за амплификацију.

Белешка:

Реакција користи непречишћени шаблон за амплификацију, тако да је број циклуса амплификације 5-10 циклуса више него када се користи пречишћени ДНК шаблон.

Корак 7: Детекција електрофорезе и анализа резултата

6.9-10
6.9-11

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

М: 100бп ДНК лествица

1\4: Метода пречишћене ДНК

2\5: Директна ПЦР метода

3\6: Празна контрола

Контрола квалитета:

Резултати теста различитих контрола постављених у експерименту треба да испуњавају следеће услове.У супротном, потребно је анализирати узрок проблема и поново извршити тест након што се проблем отклони.

Табела 1. Нормални резултати испитивања различитих контролних група

6.9-12

*Када се плазмид користи као позитивна контрола, резултат теста ендогеног гена може бити негативан

Резултат пресуде:

А. Резултат теста ендогеног гена узорка је негативан, што указује да се ДНК погодна за обичну ПЦР детекцију не може екстраховати из узорка или екстрахована ДНК садржи инхибиторе ПЦР реакције и ДНК треба поново да се екстрахује.

Б. Резултат теста ендогеног гена узорка је позитиван, а резултат теста егзогеног гена је негативан, што указује да је ДНК погодна за обичну ПЦР детекцију екстрахована из узорка и може се проценити да ген КСКСКС није детектован у узорку.

Ц. Резултат теста ендогеног гена узорка је позитиван, а резултат теста егзогеног гена је позитиван, што указује да је ДНК погодна за обичну ПЦР детекцију екстрахована из узорка, а ДНК узорка садржи КСКСКС ген.Експерименти за потврду могу се даље спроводити.

Корак 8: Дизајн прајмера за детекцију

 

6.9-13

Након експеримента, користите 2% раствор натријум хипохлорита и 70% раствор етанола да обришете експериментално подручје како бисте спречили загађење животне средине.

слепо црево

Табела 2. Често коришћени прајмери ​​за општу ПЦР детекцију генетски модификованих биљака

6.9-14

Референтни документ:

СН/Т 1202-2010, Квалитативна ПЦР метода детекције за генетски модификоване биљне састојке у храни.

Саопштење Министарства пољопривреде 1485-5-2010, Испитивање састојака генетски модификованих биљака и њихових производа - пиринча М12 и његових деривата.


Време поста: 09.06.2021